Ecosistema con Leucaena leucocephala: su efecto en la población microbiana ruminal en toros en ceba

  • Juana L. Galindo-Blanco Instituto de Ciencia Animal, Carretera Central km 47 ½, San José de las Lajas, Mayabeque, CP 32700
  • Idalmis Rodríguez-García Instituto de Ciencia Animal, Carretera Central km 47 ½, San José de las Lajas, Mayabeque, CP 32700
  • Niurca González-Ybarra Instituto de Ciencia Animal, Carretera Central km 47 ½, San José de las Lajas, Mayabeque, CP 32700
  • Roberto García- López Instituto de Ciencia Animal, Carretera Central km 47 ½, San José de las Lajas, Mayabeque, CP 32700
  • Magaly Herrera-Villafranca Instituto de Ciencia Animal, Carretera Central km 47 ½, San José de las Lajas, Mayabeque, CP 32700

Resumen

Se realizó un experimento con el objetivo de evaluar el efecto de Leucaena leucocephala vc. Perú en la población microbiana ruminal de toros mestizos de Cebú, en las dos etapas del ciclo de ceba. El sistema, integrado por cinco franjas de gramíneas asociadas con L. leucocephala y cinco sin asociar, alternadas consecutivamente en 25 ha, permitió la ceba de 80 animales, de los que se utilizaron ocho para los estudios microbiológicos. Los muestreos de líquido ruminal se realizaron con frecuencia bimensual (febrero-marzo, abril-mayo, junio-julio) y cuatrimestral (agosto-noviembre). Las bacterias celulolíticas alcanzaron valores entre 15,94 y 46,13 106 UFC.mL-1 cuando los toros pastaron L. leucocephala asociada a gramíneas. La mayor población de hongos celulolíticos ruminales se encontró en el rumen de animales en el sistema con leucaena, en los muestreos de agosto-noviembre. La concentración de amoniaco ruminal tuvo valores de 8,76 y 24,09 mmol.L-1 en el sistema con gramíneas y el de leucaena asociada con gramíneas, respectivamente (p < 0,001). El pH en rumen fue significativamente mayor, la población de bacterias viables totales resultó 2,9 veces superior y los protozoos disminuyeron cuando leucaena participó en la ración. Se concluye que es ventajoso el sistema con L. leucocephala asociada a gramíneas, debido a que propicia incrementos en las poblaciones de bacterias viables totales y microorganismos degradadores de la fibra; ello, unido al efecto depresor de los protozoarios, garantiza un ambiente ecológico favorable a la celulolisis ruminal, lo cual contribuiría de manera sostenida al incremento productivo del sistema ganadero.

Citas

1. AOAC. Manual of official methods of analysis. Washington, DC: Association of Official Analytical Chemists, 1995.

2. Balzarini, Mónica G.; Casanoves, F.; Di Rienzo, J. A.; González, Laura A. & Robledo, C. Infostat software estadístico. Manual del usuario. Versión 1. Córdoba, Argentina: Grupo InfoStat, FCA, Universidad Nacional de Córdoba, 2001.

3. Caldwell, D. R. & Bryant, M. P. Medium without fluid for non-selective enumeration and isolation of rumen bacteria. Appl. Microbiol. 14 (5):794-801, 1966.

4. Conway, E. J. Microdiffusion analysis and volumetric error. London: Crosby Lockwood Sons, Ltd, 1957.

5. Elías, A. Avances de los procesos biotecnológicos para incrementar el valor nutritivo de los alimentos. Impacto en la producción animal. II Simposio de Zootecnia, Alimentación y Genética y XXIV Congreso Panamericano de Ciencias Veterinarias (PANVET). La Habana: Asociación Consejo Científico Veterinario de Cuba. p. 35, 2014.

6. Galindo, Juana. Evaluación de plantas con capacidad antiprotozoaria en la ecología microbiana ruminal y producción de leche en vacas. Informe final de proyecto No. 003 Programa Nacional de Biotecnología Agropecuaria CITMA/GEPROP. Mayabeque, Cuba: Instituto de Ciencia Animal, 2013.

7. Galindo, Juana; García, C.; Marrero, Yoandra; Castillo, E.; Aldana, Ana I.; Torres, Verena et al. Effect of the composition of grassland of Leucaena leucocephala with grasses on the microbial rumen population in bulls. Cuban J. Agric. Sci. 41 (2):137, 2007.

8. Galindo, Juana; González, Niurca; Abdalla, A. L.; Alberto, Mariem; Lucas, R. C.; Dos Santos, K. C. et al. Effect of a raw saponins extract on ruminal microbial population and in vitro methane production with star grass (Cynodon nlemfuensis) substrate. Cuban J. Agric. Sci. 50 (1):77-88, 2016.

9. Galindo, Juana; González, Niurca; Scull, Idania; Marrero, Yoandra; Moreira, Onidia & Ruiz, T. E. Tithonia diversifolia (Hemsl.) A. Gray and its effect on the rumen population and microbial ecology. In: Lourdes L. Savón, Odilia Gutiérrez and G. Febles, eds. Mulberry, moringa and tithonia in animal feeds and others. Results in Latin American and its Caribbean. Cuba: FAO, ICA, EDICA. p. 251-256, 2017.

10. Garcia, Yaneisy & Garcia-Curbelo, Yanelys. Additives for animal feeding: The Institute of Animal Science on its 50 years. Cuban J. Agric. Sci. 49 (2):173-177, 2015.

11. Gerber, P. J.; Henderson, B. & Makkar, H. P. S., Eds. Mitigación de las emisiones de gases de efecto invernadero en la producción ganadera. Una revisión de las opciones técnicas para la reducción de las emisiones de gases diferentes al CO2. Roma: FAO, 2013.

12. Goering, H. K. & Van Soest, P. J. Forage fiber analyses (apparatus, reagents, procedures, and some applications). Agricultural Handbook No. 379. Washington, DC: US Agricultural Research Service, 1970.

13. Hungate, R. G. The anaerobic, mesophilic cellulolitic bacteria. Bacteriol Rev. 14 (1):1-49, 1950.

14. Iraola, J.; Elías, A.; Gutiérrez, D.; García, Yenny; Fraga, L. M.; Vázquez, Arelis et al. Efecto de microorganismos beneficiosos activados en la finalización de toros en silvopastoreo con leucaena, complementados con caña de azúcar. Rev. Científ. FCV-LUZ. 27 (6):403-410, 2017.

15. Iraola, J.; García, Yoleisy; Muñoz, E.; Fraga, L. M.; Barros-Rodríguez, M.; Hernández, J. L. et al. Modeling of live weight per age in fattening bovines under a silvopastoril system with Leucaena leucocephala. Cuban J. Agric. Sci. 49 (3):307-315, 2015a.

16. Iraola, J.; Muñoz, E.; García, Yenny & Hernández, J. L. Caracterización faunística en un sistema silvopastoril destinado al ganado de engorde. Pastos y Forrajes. 38 (4):418-424, 2015b.

17. Iraola, J.; Muñoz, E.; García, Yenny; Hernández, J. L. & Moreira, E. Estrategia agroecológica de transformación en un sistema de pastizales degradados con un arreglo silvopastoril. LRRD. 28 (7).http://www.lrrd.org/lrrd28/7/irao28120.html. [11/04/2017], 2016.

18. Iraola, J.; Muñoz, E.; García, Yenny; Hernández, J. L. & Moreira, E. Estrategia ecológica de rediseño para la recuperación de pasturas degradadas en un sistema agrosilvopastoril de engorde bovino. Memorias de la III Convención Internacional Agrodesarrollo 2014. Matanzas, Cuba: EEPF Indio Hatuey. p. 1040-1043, 2014.

19. Joblin, K. N. Isolation, enumeration and maintenance of rumen anaerobic fungi in roll tubes. Appl. Environ. Microbiol. 42 (6):1119-1122, 1981.

20. Ku-Vera, J. C. Manipulación del metabolismo energético de los rumiantes en los trópicos: opciones para mejorar la producción y la calidad de la carne y leche. IV Congreso Internacional Producción Animal Tropical. La Habana, 2013.

21. Leng, R. A. Interactions between microbial consortia in biofilms: a paradigm shift in rumen microbial ecology and enteric methane mitigation. Anim. Prod. Sci. 54 (5):519-543, 2014.

22. McSweeney, C. S.; Palmer, B.; Bunch, R. & Krause, D. O. Isolation and characterization of proteolytic ruminal bacteria from sheep and goats fed the tannin-containing shrub legume Calliandra calothyrsus. Appl. Environ. Microbiol. 65 (7):3075-3083, 1999.

23. Prieto-Manrique, E. Efecto de la suplementación con aceites vegetales a vacas pastoreando con/sin sistema silvopastoril intensivo con leucaena sobre los ácidos grasos en la leche y la producción de metano in vitro. Sistemas silvopastoriles. Aportes a los objetivos de desarrollo sostenible. IX Congreso Internacional de Sistemas Silvopastoriles. Cali, Colombia: CIPAV, 2017.

24. Rivera, J. E.; Molina, C. H.; Molina, J. J.; Molina, E. J.; Chará, J. & Barahona, R. Determinación de las emisiones de gases de efecto invernadero (GEI) provenientes de la orina y el estiércol bovino en dos sistemas de pastoreo orientados a la producción de leche. Actas del III Congreso Nacional de Sistemas Silvopastoriles, VII Congreso Internacional de Sistemas Agroforestales. Misiones, Argentina: Ediciones INTA. p. 565-569, 2015.

25. Rodríguez, R.; de la Fuente, G.; Gómez, S. & Fondevila, M. Biological effect of tannins from different vegetal origin on microbial and fermentation traits in vitro. Anim. Prod. Sci. 54 (8):1039-1046 2013.

26. Rodríguez, R.; González, Niurca; Alonso, J.; Domínguez, Marbelis & Sarduy, Lucía. Nutritional value of foliage meal from four species of tropical trees for feeding ruminants. Cuban J. Agric. Sci. 48 (4):371-378, 2014.

27. Ruiz, T. E. Siembra, establecimiento y biomasa de Leucaena leucocephala. II Taller Internacional Silvopastoril Cuba-Colombia. Bogotá: CORPOICA, Instituto de Ciencia Animal. p. 115, 2005.

28. Zhou, Y. Y.; Mao, H. L.; Jiang, F.; Wang, J. K.; Liu, J. X. & McSweeney, C. S. Inhibition of rumen methanogenesis by tea saponins with reference to fermentation pattern and microbial communities in Hu sheep. Anim. Feed Sci. Technol. 166-167:93-100, 2011.
Publicado
2018-07-10
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GALINDO-BLANCO, Juana L. et al. Ecosistema con Leucaena leucocephala: su efecto en la población microbiana ruminal en toros en ceba. Pastos y Forrajes, [S.l.], v. 41, n. 2, p. 138-144, jul. 2018. ISSN 2078-8452. Disponible en: <https://payfo.ihatuey.cu/index.php?journal=pasto&page=article&op=view&path%5B%5D=2038>. Fecha de acceso: 20 nov. 2018
Sección
Artículo científico