Influencia del EcoMic® y el Pectimorf® en el establecimiento de Leucaena leucocephala (Lam.) de Wit. cv. Cunningham

  • Maritza Rizo-Alvarez Estación Experimental de Pastos y Forrajes Indio Hatuey, Universidad de Matanzas, Ministerio de Educación Superior Central España Republicana, CP 44280, Matanzas, Cuba
  • Dariel Morales-Querol Estación Experimental de Pastos y Forrajes Indio Hatuey, Universidad de Matanzas, Ministerio de Educación Superior Central España Republicana, CP 44280, Matanzas, Cuba
  • Tania Sánchez-Santana Estación Experimental de Pastos y Forrajes Indio Hatuey, Universidad de Matanzas, Ministerio de Educación Superior Central España Republicana, CP 44280, Matanzas, Cuba
  • Onel López-Vigoa Estación Experimental de Pastos y Forrajes Indio Hatuey, Universidad de Matanzas, Ministerio de Educación Superior Central España Republicana, CP 44280, Matanzas, Cuba
  • Yuseika Olivera-Castro Estación Experimental de Pastos y Forrajes Indio Hatuey, Universidad de Matanzas, Ministerio de Educación Superior Central España Republicana, CP 44280, Matanzas, Cuba
  • Miguel A. Benítez-Alvarez Estación Experimental de Pastos y Forrajes Indio Hatuey, Universidad de Matanzas, Ministerio de Educación Superior Central España Republicana, CP 44280, Matanzas, Cuba
  • Fernando Ruz-Suárez Estación Experimental de Pastos y Forrajes Indio Hatuey, Universidad de Matanzas, Ministerio de Educación Superior Central España Republicana, CP 44280, Matanzas, Cuba

Resumen

La investigación tuvo como objetivo evaluar la influencia del biofertilizante EcoMic®, el producto bioactivo Pectimorf® y su combinación, sobre algunas variables morfobotánicas durante el establecimiento de Leucaena leucocephala (Lam.) cv. Cunningham. Para ello se utilizó un diseño de bloques al azar con tres réplicas, y los siguientes tratamientos: T1: escarificación térmica (testigo), T2: inoculación con EcoMic®, T3: imbibición en Pectimorf®, T4: imbibición en Pectimorf® + inoculación con EcoMic®. Las variables altura, número de ramas y grosor del tallo se midieron hasta los 12 meses. Los mejores valores de cada variable se obtuvieron cuando, después de la escarificación térmica (T1), las semillas se inocularon con EcoMic® (T2) o se embebieron en Pectimorf® (T3), sin diferencias significativas entre ambos; mientras que el testigo presentó los menores valores. La altura se incrementó en T2 y T3 en un 12 %, con respecto a T1. Se concluye que la imbibición en Pectimorf® o la inoculación con EcoMic® de las semillas de L. leucocephala cv. Cunningham, posteriormente a la escarificación térmica, mejoró la respuesta biológica de las plantas durante el establecimiento en cuanto a su altura, número de ramas y grosor del tallo. De ahí que puedan utilizarse de manera indistinta, con vista a acortar dicho periodo en los sistemas ganaderos donde sea utilizada.

Citas

1. Ayala-Boza, P. J.; Tornés-Olivera, N. & Reynaldo-Escobar, Inés M. Efecto de biofertilizantes y Pectimorf® en la producción de soya (Glycine max L.) en condiciones de secano. Granma Ciencia.17 (2):1-11, 2013.

2. Bagyaraj, D. J.; Sharma, M. P. & Maiti, D. Phosphorus nutrition of crops through arbuscular mycorrhizal fungi. Curr. Sci. 108 (7):1288-1293, 2015.

3. Bonareri-Oruru, Marjorie & Mugendi-Njeru, E. Upscaling arbuscular mycorrhizal symbiosis and related agroecosystems services in smallholder farming systems. BioMed Research International. 2016:1-12. https://www.hindawi.com/journals/bmri/ai/. [23/05/2018], 2016.

4. Bover-Felices, Katia; López-Vigoa, O.; Rizo-Álvarez, Maritza & Benítez-Álvarez, M. A. Efecto del EcoMic® y el Pectimorf® en el crecimiento de plántulas de Leucaena leucocephala cv. Cunningham. Pastos y Forrajes. 40 (2):102-107, 2017.

5. Cabrera, J. C. Obtención de una mezcla de (1-4) á-D oligogalacturónidos bioactivos a partir de un grupo de subproductos de la industria citrícola. Tesis de doctorado. San José de las Lajas, Cuba: Instituto Nacional de Ciencias Agrícolas, 2000.

6. Cevallos, A. M. Establecimiento de una metodología eficiente en el proceso de embriogénesis somática en el cultivo de cafeto (Coffea spp.) mediante el uso de marcadores morfohistológicos y moleculares. Tesis de Doctorado. San José de las Lajas, Cuba: Instituto Nacional de Ciencias Agrícolas, 2000.

7. Corbera, J. & Nápoles, María C. Efecto de la inoculación conjunta Bradyrhizobium elkanii-hongos MA y la aplicación de un bioestimulador del crecimiento vegetal en soya (Glycine max (L.) Merrill), cultivar INCASOY-27. Cultivos Tropicales. 34 (2):5-11.

8. Cuesta, I.; Rengifo, Emelina; Ferrer, Anairad & Leyva, Ibian. Impacto de Glomus mosseae en la agroforestería. XV Congreso Científico. Programa y resúmenes. San José de las Lajas, Cuba: Instituto Nacional de Ciencias Agrícolas. p. 119-120, 2006.

9. Dantas, B. L.; Weber, O. B.; Neto, J. P. M.; Rossetti, A. G. & Pagano, Marcela C. Diversidade de fungos micorrízicos arbusculares em pomar orgânico no semiárido cearense. Cienc. Rural. 45 (8):1480-1486, 2015.

10. Doll, Ursula; Norambuena, Catherine & Sánchez, O. Efecto de la aplicación de IBA sobre el enraizamiento de estacas en seis especies arbustivas nativas de la región mediterránea de Chile. Idesia (Arica). 31 (3):65-69, 2013.

11. Duran-Alvernia, H. Caracterización de diez especies arbóreas nativas con potencial para el establecimiento de sistemas silvopastoriles. Trabajo de grado presentado como requisito para optar el título de Tecnólogo Agroforestal. Curumaní, Colombia: Escuela de Ciencias Agrícolas Pecuarias y del Medio Ambiente, Universidad Nacional Abierta y a Distancia, 2017.

12. González, Yolanda & Mendoza, F. Efecto del agua caliente en la germinación de las semillas de Leucaena leucocephala cv . Perú. Pastos y Forrajes. 31 (1):47-52, 2008.

13. Guisande-Collazo, Alejandra; González, L. & Souza-Alonso, P. Impact of an invasive nitrogen-fixing tree on arbuscular mycorrhizal fungi and the development of native species. AoB Plants. 8. https://academic.oup.com/aobpla/article/doi/10.1093/aobpla/ plw018/2609532. [20/03/2018], 2016.

14. Hernández-Jiménez, A.; Pérez- Jiménez , J. M.; Bosch-Infante, D. & Castro-Speck, N. Clasificación de los suelos de Cuba 2015. Mayabeque, Cuba: Instituto Nacional de Ciencias Agrícolas, Instituto de Suelos, Ediciones INCA, 2015.

15. Hernández, M.; Beltrán, E. & Soriano, L. El crecimiento de la raíz de Arabidopsis thaliana es afectado por un oligogalacturónido estimulador de defensa. Ciencia Nicolaita. (49):141-154, 2007.

16. INCA. Manual de instructivo técnico del EcoMic®. Permiso de Seguridad Biológica No. 41/02. Patente No. 2264. San José de las Lajas, Cuba: Instituto Nacional de Ciencias Agrícolas, 2003.

17. Izquierdo, H.; González, María C. & Núñez, Miriam de la C. Estabilidad genética de las plantas de banano (Musa spp.) micropropagadas con reguladores del crecimiento no tradicionales. Biotecnología Aplicada. 31 (1):18-22, 2014.

18. João, J. P.; Mutunda, M. P.; Taíla, A. F. & Rivera-Espinosa, R. Potencialidad de los inoculantes micorrízicos arbusculares en el cultivo de la yuca (Manihot esculenta Crantz) en Kibala, Angola. Cultivos Tropicales. 37 (2):33-36, 2016.

19. Kollárová, Karin; Zelko, I.; Henselová, Mária; Capek, P. & Lišková, Desana. Growth and anatomical parameters of adventitious roots formed on mung bean hypocotyls are correlated with galactoglucomannan oligosaccharides structure. Scientific World Journal. 2012, 2012.

20. Mederos-Torres, Yuliem & Hormaza-Montenegro, Josefa. Consideraciones generales en la obtención, caracterización e identificación de los oligogalacturónidos. Cultivos Tropicales. 29 (1):83-90, 2008.

21. Nápoles-Vinent, Sucleidis; Garza-Borges, Taymi & Reynaldo-Escobar, Inés M. Respuesta del cultivo de habichuela (Vigna unguiculata L.) var. Lina a diferentes formas de aplicación del Pectimorf®. Cultivos Tropicales. 37 (3):172-177, 2016.

22. Pentón, Gertrudis; Reynaldo, Inés; Martín, G. J.; Rivera, R. & Oropesa, Katerine. Uso del EcoMic® y el producto bioactivo Pectimorf® en el establecimiento de dos especies forrajeras. Pastos y Forrajes. 34 (3):281-294, 2011.

23. Petit-Aldana, Judith; Casanova-Lugo, F. & Solorio-Sánchez, F. Rendimiento de forraje de Leucaena leucocephala, Guazuma ulmifolia y Moringa oleifera asociadas y en monocultivo en un banco de forraje. Revista Forestal Venezolana. 54 (2):161-167, 2010.

24. Ramos-Font, María E.; González-Rebollar, J. L. & Robles-Cruz, Ana B. Dispersión endozoócora de leguminosas silvestres: desde la recuperación hasta el establecimiento en campo. Ecosistemas 24 (3):14-21.

25. Ramos-Hernández, Leudiyanes. Uso de Pectimorf®, fitomas-E e inóculos microbianos para el enraizamiento de esquejes y el crecimiento de posturas de guayaba (Psidium guajava, l.) enana roja cubana. Tesis en opción al grado científico de Doctor en Ciencias Agrícolas. San José de las Lajas, Cuba: Instituto Nacional de Ciencias Agrícolas, 2014.

26. Savatin, D. V.; Suárez, L.; Salvi, G.; De Lorenzo, Giulia; Cervone, Felice & Ferrari, Simone. The non-traditional growth regulator Pectimorf® is an elicitor of defense responses and protects Arabidopsis against Botrytis cinerea. J. Plant Pathol. 95 (1):177-180, 2013.

27. Seguí, Esperanza; Machado, R. & Wencomo, Hilda B. I. Informe final del Proyecto Caracterización botánica y morfoagronómica de una colección de Leucaena spp.y selección de las mejores accesiones para los sistemas agroforestales. Matanzas, Cuba: EEPF Indio Hatuey, 2002.

28. Terrero, J. C. Evaluación de 3 sustancias biostimulantes en el cultivo del pepino (Cucumis sativus, L.) en condiciones de organopónico. http://www.monografias.com/trabajos46/cultivo-pepino/cultivo -pepino.shtml. [13/12/2017], 2010.

29. Vázquez, E. & Torres, S. Fisiología vegetal. Editorial Félix Varela: La Habana, 2006.
Publicado
2018-10-26
Ver tu Cita
RIZO-ALVAREZ, Maritza et al. Influencia del EcoMic® y el Pectimorf® en el establecimiento de Leucaena leucocephala (Lam.) de Wit. cv. Cunningham. Pastos y Forrajes, [S.l.], v. 41, n. 3, p. 183-188, oct. 2018. ISSN 2078-8452. Disponible en: <https://payfo.ihatuey.cu/index.php?journal=pasto&page=article&op=view&path%5B%5D=2045>. Fecha de acceso: 16 nov. 2018
Sección
Artículo científico